чем обездвижить хряка для кастрации
Особенности техники кастрации взрослых хряков и поросят
Холощение или кастрация поросят – искусственное удаление семенников у хряков и яичников у свиней.
Активная работа половых желез у взрослеющих самцов, а пенис с широкой спиралевидной головкой в возбуждённом состоянии у них достигает полуметрового размера, которые откармливаются не с целью воспроизводства потомства, а для получения высококачественного мяса, приводит к массе неприятных последствий и проблем.
Неопытных животноводов и потребителей волнует вопрос — как убрать неприятный запах мяса у хряков.
Цели стерилизации
Ветеринары, помимо хирургического метода, приостанавливают выработку семени или удаляют половые железы кабанчиков с помощью химического, радиоактивного, гормонального вмешательства — бескровным методом.
В домашних условиях на ранних стадиях развития поросёнка, в возрасте 10 — 45 дней, проводится операция стерилизации ручным, кровавым методом – надёжным методом изменения гормонального фона.
Кастрация поросят в первые дни жизни переносится легче, без последующих осложнений, с минимумом потери крови.
Стерилизованный повзрослевший поросенок – это кабан:
Обязательна кастрация хряков в целях предотвращения запаха мочи от мясных продуктов переработки.
Кастрация в более зрелом возрасте проводится по медицинским показателям, когда операция — единственный способ удаления грыжи, новообразования, воспаления половых желез и других патологий.
Стерилизуют животных и для предотвращения нежелательного покрытия самок самцами, непригодными на племя.
Способы кровавой кастрации
Опираясь на такие показатели, как возраст, масса, лечебная необходимость, кровавое холощение проводится открытым или закрытым способом.
Перед стерилизацией необходима предварительная подготовка животного и послеоперационное за ним наблюдение. Операция может проводиться в любое время года, желательно в утренние часы.
Способы домашней кастрации свиней могут быть следующими.
Закрытая операция по медицинским показаниям (для взрослых хряков)
Открытое холощение (для поросят любого возраста)
Инструменты и приспособления
Перед тем, как осуществится кастрация поросят, все необходимые инструменты, станок, руки хирурга тщательно моются с мылом и обрабатываются дезинфицирующим раствором.
Для операции холощения необходимо подготовить:
Кастрация молодых поросят
Манипуляция удаления половых желёз у молодых поросят подсосного периода выполняется способом открытого холощения. Семенники удаляются при помощи обрыва семенного канатика.
Ход операционных действий:
Соблюдение всех санитарных требований, неделя проведения мониторинга за животным позволят предотвратить возможный абсцесс или другие осложнения.
Мошоночная грыжа и её оперирование
Закрытая операция по удалению мошоночной грыжи назначается взрослым хрякам, за 60 – 65 дней до убоя. Обязательное соблюдение интервалов в 14 – 15 дней между этой процедурой и профилактической вакцинацией позволит предотвратить опасные осложнения.
Операционные действия по удалению «паховой грыжи»:
Советы для новичков
Есть несколько хитростей — как убрать запах хряка из мяса. Можно вымачивать мясо хряка в нескольких порциях холодной воды до полного исчезновения запаха.
Применяется сода, марганцовка, горчица, лимон, молоко, кефир. Используются в приготовлении специи. Еще один способ, как убрать запах — замариновать с большим количеством лука и чеснока.
Вывод
Процедура орхиэктомии хрячков, в возрасте сосунка, проходит безболезненней, легче, с меньшими потерями крови, пенис и функция мочеиспускания во время манипуляции с животным не повреждаются.
Опытному кастрирующему или ветеринару хватит для проведения данной операции 1-2 минуты.
Главная причина проведения процедуры – высокое качество мясопродуктов, увеличение массы боровов при меньших затратах на корма.
Кастрация поросят
Кастрированный хряк не всегда лучше обычного (+ видео)
Традиционно процедуру кастрации хрячков проводят ради получения экономической выгоды. Мясо некастрированных животных пропитывается характерным неприятным запахом половых желез и отличается более низким качеством. Кроме того, к моменту полового созревания хряки становятся очень агрессивными и могут драться друг с другом или нападать на людей. Но действительно ли нет альтернативы этому, прямо скажем, не совсем гуманному методу?
Когда проводить кастрацию хряков?
Поросят кастрируют в возрасте 10-45 дней. На счет конкретного возраста существует несколько мнений. Во-первых, ранняя кастрация менее болезненна для животного. Но и здесь слишком торопиться не стоит, доказано, что в возрасте 14-ти дней процедура приносит поросенку намного меньше боли, чем в возрасте 7-ми дней. К преимуществам проведения ранней кастрации относят и меньшую кровопотерю, и незначительное сопротивление поросенка, что облегчает работу и не требует привлечения помощника.
Рис. 1. Станок для кастрации поросят
Если же говорить о проведении кастрации в более поздние сроки, здесь есть свои плюсы. Считается, что некастрированные поросята сосуны быстрее растут и развиваются. А проведение этой болезненной операции в середине подсосного периода может отрицательно сказаться на питании поросят.
Кастрацию нельзя проводить одновременно с вакцинацией и дегельминтизацией. Все эти операции следует проводить с интервалом в 2 недели.
Какой бы срок вы не выбрали, помните, что оптимальнее всего провести кастрацию за 5-7 дней до отъема, чтобы раны зажили до перевода животного на отдельную площадку.
Конечно, кастрировать можно и взрослых поросят, но в этом случае стоит учитывать два момента. Как только хряк достигает живого веса 100 кг – его мясо пропитывается неприятным запахом. И второе – чем старше животное, тем болезненней для него операция и дольше период реабилитации. Для взрослых хряков, к тому же, необходим наркоз или более сложные приспособления для фиксации.
Как кастрировать поросят
Фиксация животного производится в спинном положении. Необходимо выстричь волосы на мошонке, а кожу обработать спиртом или 5%-ным спиртовым раствором йода. В раннем возрасте хрячкам делают местное обезболивание, взрослому животному показано введение внутримышечно 4% раствора азаперона по 1 мл на каждые10 кг. веса.
Процедуру кастрации выполняют двумя способами, открытым или закрытым.
Открытый способ:
Кастрация методом обрывания семенного канатика
Применяется для хрячков в возрасте 10-15 дней.
Технология: захватывают семенник между указательным и большим пальцами левой руки и рассекают скальпелем все ткани мошонки, включая и общую влагалищную оболочку. Разрез наносят параллельно шву мошонки, отступя от него на 0,5-1 см. После чего обнаженный семенник извлекают и перерезают переходную связку.
Затем смещают левой рукой ткани к наружному паховому кольцу, пропуская между пальцами семенной канатик. Правой рукой захватывают семенник, перекручивают его по длинной оси и несколько оттягивают от брюшной стенки. Затем левой рукой через кожу шейки мошонки фиксируют семенной канатик, повертывают его вокруг указательного пальца правой руки и вытягивают до обрыва семенного канатика. Можно обрывать резким движением. Рану необходимо припудрить антисептическим порошком или смазать ее края вазелиновым маслом с антибиотиком.
Рис. 3. Вытягивание семенного канатика
Кастрация на лигатуру
Применяется для хрячков в возрасте от 10 дней и старше.
Технология: после перерезки переходной связки (см предыдущую технологию кастрации) левой рукой оттесняют рассеченные ткани к брюшной стенке, пропуская семенной канатик между средним и указательным пальцами. На обнаженный семенной канатик накладывают лигатуру (шелк, кетгут, нитки). Отступя от лигатуры на 0,5 — 1 см по направлению к семеннику, перерезают семенной канатик, оставшуюся культю смазывают 5-6-ным спиртовым раствором йода или раствором йода с глицерином (1:10), а края раны — вазелиновым маслом.
Закрытый способ кастрации
Применяется для кастрации взрослых животных или поросят с интравагинальными грыжами.
Технология: при проведении операции влагалищная оболочка не вскрывается. От окружающих тканей оболочку отделяют марлевым тампоном. На семенной канатик с общей влагалищной оболочкой, ближе к паховому кольцу, накладывают лигатуру и отсекают семенник ниже ее. Аналогичным способом отсекают второй семенник.
Химическая кастрация хряков
В начале октября 2013 года во Франции прошла конференция, посвященная запрету на кастрацию свиней в странах Евросоюза. Участие в мероприятии приняли около 170 делегатов от производителей свинины и продовольственных сетей.
Отказаться от кастрации для Европы – означает сделать еще один шаг на пути к улучшению благополучия животных и заботе об их эмоциональном состоянии. Эта процедура весьма болезненна и вызывает у свиней сильный стресс, что не может не отразиться на последующем физиологическом состоянии. К тому же, этичность кастрации свиней уже давно вызывает у борцов за права животных сильные сомнения.
Помимо этической стороны вопроса, хирургическая кастрация является причиной множества последующих заболеваний свиней, связанных с занесением инфекции и воспалительным процессом.
Продвинутые европейцы в декабре 2010 года приняли «Брюссельскую декларацию» где заинтересованные стороны от свиноводческой промышленности в ЕС, говорили об остановке хирургической кастрации свиней и замещение ее на химическую с использованием анестезии и медицинских препаратов нового поколения.
Кастрация поросенка (18+)
Однако основным вопросом, который до сих пор остается открытым, является первопричина столь пристального внимания к мужскому достоинству хряков – неприятных запах мяса.
Как выяснилось, и это давно не проблема. На настоящий момент существует несколько методов измерения приемлемости вкуса и запаха свинины со стороны потребителя, одним из которых является химический анализ.
Немецкие, голландские, французские, датские фермерские и отраслевые организации совместно с Европейской группой по защите животных уже разработали соответствующий свод правил по уходу за свиньями, способствующий избавлению хряков от неприятного запаха без кастрации. Технология включает в себя особые методы кормления, минимизацию агрессии при транспортировке и половой охоте, а также обязательное доброжелательное отношение. Постановление вступит в силу с 2018 года.
Конечно, пока еще нельзя достоверно сказать, насколько эффективным окажется подобная методика и действительно ли она поможет избавить мясо хряков от запаха без хирургической кастрации. Специалисты сходятся во мнении, что для проведения подобных исследований необходимо время.
О технологиях получения «счастливой свиньи» читаем здесь
Иммунологическая кастрация хрячков и ее преимущества
Иммунизируемых животных разделили на две опытные группы: первой препарат применяли в девятинедельном, а второй – в 17-недельном возрасте. Повторно Импровак® вводили хрякам обеих групп по достижении 21-недельного возраста. Для сравнения служили некастрированные и физически кастрированные хряки. У иммунизированных свиней обеих опытных групп и некастрированных хряков до повторной инъекции препарата в 21-недельном возрасте уровень тестостерона в крови был сопоставимым, но через две и пять недель после второго введения Импровака® у иммунизированных хряков отмечалось снижение концентрации этого гормона до уровня физически кастрированных животных (P
В другом небольшом исследовании было показано, что физиологические изменения (снижение концентрации лютеинизирующего гормона и тестостерона) фактически происходят уже на пятый день после повторного введения препарата (Claus et al., 2007).
Оценка ЗМХ посредством химического анализа
В таблице 2 представлены данные 57 исследований, проведенных в разных странах. Результаты отражены в виде относительного количества (%) свиней с низким уровнем содержания в мясе андростенона и скатола – 1,0 и 0,2 мкг/г соответственно. Из таблицы 2 видно, что иммунологически кастрированные препаратом Импровак® животные продемонстрировали высокую эффективность (приблизительно 99,5%) по контролю ЗМХ. В то же время при тестировании мяса некастрированных хряков (35 исследований) отмечалось частое проявление ЗМХ (приблизительно у 40% и 15% из них концентрация в мясе андростенона и скатола превышала 1,0 и 0,2 мкг/г соответственно).
Важно отметить, что в выполненных исследованиях при иммунологической кастрации хрячков препаратом Импровак® не предусматривался контроль качества вакцинации через две недели после повторного введения, когда должна определяться необходимость его дополнительного использования. Такой стандартный подход предназначен для обеспечения качества коммерческого применения препарата.
Органолептические исследования по выявлению ЗМХ
Оценка содержания в мясе андростенона и скатола посредством химического анализа служит надежным методом выявления ЗМХ. Однако, как уже было описано ранее, ЗМХ вызывается комплексом причин и по определению является качественной характеристикой мяса, чувственно воспринимаемой человеком. Кроме того, ЗМХ возникает в результате совместного действия андростенона и скатола. Таким образом, проверка качества свинины профессиональными дегустаторами и потребителями может предоставить дополнительную возможность оценки эффективности препарата для иммунологической кастрации.
В таблице 3 приведены обобщенные результаты органолептической оценки эффективности препарата Импровак® в обширных исследованиях, проведенных в 34 странах мира. Причем в 19 из них – на высоком научном уровне. В 15 странах проверку выполняли профессиональные дегустаторы, в 16 – потребители, в пяти – работники (инспекторы) скотобоен. В некоторых исследованиях одновременно велись разного рода проверки. В целом при органолептической оценке качества свинины, полученной от иммунологически кастрированных животных препаратом Импровак®, оно не отличалось от мяса животных физически кастрированных, а также свинок (если последние были включены в исследования). При этом в 11 из 13 сравнений, включавших некастрированных хряков, мясо обработанных препаратом Импровак® животных признали лучшим. Также получено подтверждение более высокого качества мяса кастрированных хряков (как иммунологически, так и физически) по сравнению с некастрированными даже в таких странах, как Австралия и Великобритания, в которых последних подвергают убою в молодом возрасте, отправляя полученные продукты в обычную торговую сеть.
Заключение
Импровак® (производство компании «Зоэтис») – первый в мире иммунологический препарат, предназначенный для снижения ЗМХ при убое свиней. Действуя на иммунную систему животных, он снижает образование стероидных соединений, которые вызывают ЗМХ у хряков в процессе полового созревания. Иммунологическая кастрация этим препаратом представляет собой эффективную замену физической.
Накоплено большое количество фактического материала, подтверждающего высокие результаты применения Импровака® для устранения ЗМХ, как использованием химического анализа, так и органолептической оценки. В частности, выполнено 57 исследований, включавших химический анализ, и 34 эксперимента с целью органолептической оценки качества свинины.
Исследования проводили в разных странах мира, охватывая различные породы свиней и системы их выращивания. Их результаты стабильно демонстрируют, что в целях предотвращения ЗМХ у животных при убое иммунизация препаратом Импровак® не уступает физической кастрации хряков, имея ряд существенных преимуществ. Поскольку этот препарат можно применять в поздние сроки жизни свиней, большую часть периода откорма их можно содержать в естественных условиях. За счет собственных анаболических факторов роста животные достигают более высокой продуктивности, демонстрируя лучшую конверсию корма и повышенный выход постной свинины в сравнении с физически кастрированными особями, одновременно позволяя контролировать ЗМХ при убое (Dunshea et al., 2001).
К числу дополнительных преимуществ Импровака® относится и значительное уменьшение объема выделяемых свиньями фекалий вследствие лучшего усвоения корма, отсутствие болевой реакции, возникающей после физической кастрации, а также снижение падежа поросят в послеотъемный период (Allison et al., 2010). Все это дает основание назвать Импровак® одним из важнейших достижений в области свиноводства, благодаря которому можно получать продукцию высокого качества без ЗМХ, преумножая прибыль хозяйства.
Литература
1. AldaI et al. Levels of androstenone and skatole and the occurrence of boar taint in fat from young boars. Livestock Production Science, 2005. 95:121–129.
2. Allison J. et al. A comparison of mortality (animal withdrawal) rates in male fattening pigs reared using either physical castration or vaccination with Improvac as the method to reduce boar taint. Proceedings 21st IPVS Congress. Vancouver, Canada, 2010.
3. Allison J. et al. Incidence of boar taint in entire male pigs in Europe, assessed by chemical assay of androstenone and skatole. Proceedings 57th ICoMST meeting. Ghent, Belgium, 2011.
4. Babol J. & Squires J. Quality of meat from entire male pigs. Food Research International, 1995. 28:201–212.
5. Bonneau M. Compounds responsible for boar taint, with special emphasis on andro-stenone: A review. Livestock Production Science, 1982. 9:687–705.
6. Chen G. et al. Regulation of cytochrome P450 2A6 protein expression by skatole, indole and testicular steroids in primary cultured porcine hepatocytes. Drug Metabolism and Disposition, 2008. 36:56–60.
7. Claus R. et al. Physiological aspects of androstenone and skatole in the boar – a review with experimental data. Meat Science, 1994. 38:289–305.
8. Claus R. et al. Short-term endocrine and metabolic reactions before and after second immunization against GnRH in boars. Vaccine, 2007. 25:4689–4696.
9. Doran E. et al. Cytochrome P450IIE1 (CYP2E1) is induced by skatole and this induction is blocked by androstenone in isolated pig hepatocytes. Chem. Biol. Interact., 2002. 140:81–92.
10. Dunshea F. et al. Vaccination of boars with a GnRH vaccine (Improvac®) eliminates boar taint and increases growth performance. Journal of Animal Science, 2001. 79:2524–35.
11. EFSA report. Welfare aspects of the castration of piglets. The EFSA Journal, 2004. 91:1–18.
12. Font & Furnols M. et al. Sensory charac-terization of meat from pigs vaccinated against gonadotropin releasing factor compared to meat from surgically castrated, entire male and female pigs. Meat Science, 2009. 83:438–442.
13. Fuchs T. et al. Effect of a gonadotropin-releasing factor vaccine on follicle-stimulating hormone and luteinizing hormone concentrations and on the development of testicles and the expression of boar taint in male pigs. Therioge-nology, 2009.72:672–680.
14. Gilbert A. & Wysocki C. The Smell Survey. National Geographic, 1987. 172:4:514–525.
15. Gomez C. et al. Consumer acceptance and preference of pork ribs from immunocastrated and physically castrated boars. Proceedings 56th ICoMST meeting. Jeju, Korea, 2010.
16. Malmfors B. & Hansson I. Incidence of boar taint in Swedish, 1974.
17. Landrace and Yorkshire boars. Livestock Production Science, 10:187–196.
18. Miller D. & Ragland D. Observational study of the prevalence of scrotal hernias, cryp torchidism, incision healing complications and impaired growth performance pre-weaning of surgically castrated pigs. Proceedings AASV Annual Meeting, 2011. 319–320.
19. Prusa K. et al. Prevalence and relationships of sensory taint, 5μ-androstenone and skatole in fat and lean tissue from the loin (Longissimus dorsi) of barrows, gilts, sows, and boars from selected abattoirs in the United States. Meat Science, 2011. 88:3666–3682.
20. Schmoll F. et al. Growth performance and carcass traits of boars raised in Germany and either surgically castrated or vaccinated against gonadotropin-releasing hormone. J. Swine Health Prod., 2009. 17(5):250–255.
21. Squires J. & Lou Y. Levels of boar taint in purebred entire male pigs in Ontario. Ontario Swine Research Review. OAC Publication. University of Guelph. Guelph, Canada, 1995.
22. Tambyrajah W. et al. The pig CYP2E1 promoter is activated by COUP-TF1 and HNF-1 and is inhibited by androstenone. Arch. Biochem. Biophys., 2004. 431:252–260.
23. Weiler U. et al. Influence of androstenone sensitivity on consumer reactions to boar taint. Proc. EAAP Working Group. Stockholm, Sweden. October 1–3. 1997.
24. Xue J. et al. Breed differences in boar taint: relationship between tissue levels of boar taint compounds and sensory analysis of taint. Journal of Animal Science, 1996. 74:2170–2177.
25. Zamaratskaia G. & Squires E. Biochemical, nutritional and genetic effects on boar taint in entire male pigs. Animal, 2009. 3(11):1508–1521.
Импровак
Для задержки развития тестикулов у хрячков не достигших половой зрелости и для супрессии функции тестикулов и их регрессии у животных достигших половой зрелости
Показания к применению
Применяют для иммунологической кастрации хряков, с целью предотвращения неприятного запаха мяса и подавления агрессивного поведения.
Состав и форма выпуска
Пластиковые флаконы по 100 мл.
Механизм действия препарата заключается в стимуляции выработки нейтрализующих антител против гонадотропинрелизинг фактора, пептидного гормона, обеспечивающего развитие и функционирование тестикулов у хряков. Снижение концентрации релизинг-фактора гонадотропина, приводит к снижению концентрации в крови лютеинизирующего и фолликулостимулирующего гормонов. Снижение концентрации этих гормонов в крови хрячков не достигших половой зрелости, приводит к задержке развития тестикулов. У животных достигших половой зрелости, блокада образования лютеинизирующего и фолликулостимулирующего гормонов приводит к супрессии функции тестикулов и их регрессии. Таким образом, обработка хряков приводит к блокаде функции семенников и как следствие обеспечивает отсутствие неприятного запаха мяса хряков.
Применяют животным (самцам) двукратно, с интервалом не менее 4-х недель, начиная с 2-х месячного возраста. Препарат вводят подкожно, за ухо, в дозе 2 см3. Второе введение препарата проводят за 4-6 недель до убоя.
Условия и сроки хранения
Импровак хранят с предосторожностью по списку Б при температуре от 2° до 8°С в недоступном для детей месте. Не замораживать. Срок годности 39 месяцев. После прокола пробки и отбора из флакона первой дозы, препарат можно использовать в течение 28 дней. Не применять Импровак после истечения срока годности.